猪瘟病毒蛋白论文-吴锐,潘兹书

猪瘟病毒蛋白论文-吴锐,潘兹书

导读:本文包含了猪瘟病毒蛋白论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:猪瘟病毒,Core蛋白,核仁定位

猪瘟病毒蛋白论文文献综述

吴锐,潘兹书[1](2019)在《猪瘟病毒Core蛋白核仁定位序列鉴定》一文中研究指出黄病毒科病毒核衣壳蛋白的核仁定位在病毒颗粒包装与病毒复制中发挥重要作用。为鉴定黄病毒科的猪瘟病毒Core蛋白核仁定位序列,本研究构建了将Core蛋白、截短突变体和氨基酸位点突变体分别与增强型绿色荧光蛋白(enhanced green fluorescent protein, EGFP)融合的真核表达质粒,转染至PK15细胞后进行表达和定位分析,结果显示Core蛋白核仁定位序列为PESRKKL,其关键氨基酸为R76K77,对理解猪瘟病毒Core蛋白结构与功能和为后续研究Core蛋白在病毒复制及颗粒包装中的作用有重要意义。(本文来源于《微生物与感染》期刊2019年05期)

郭东光,陈明艳,朱艳平,李鹏,岳锋[2](2019)在《猪瘟病毒结构蛋白E0抗体间接ELISA检测方法的建立及优化》一文中研究指出为建立一种经济、可靠的猪瘟病毒(CSFV)血清抗体检测方法,采用间接ELISA(E0-ELISA)方法,以在大肠杆菌(Escherichia coli)中表达的重组蛋白E0为包被原,优化反应条件。结果显示,优化后的E0-ELISA在包被原1.0μg/mL质量浓度下37℃包被1 h效果最佳,最佳封闭条件为5%脱脂奶粉溶液37℃作用2 h,待检血清以1∶100稀释后37℃作用60 min效果最佳,二抗以1∶5 000稀释后37℃孵育45 min效果最佳。当OD_(450)<0.370时,判断为猪血清CSFV抗体阴性;批内和批间重复试验变异系数分别为1.99%~7.69%和2.16%~9.23%,表明该方法具有良好的稳定性;E0-ELISA检测猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪伪狂犬病毒(PRV)、猪圆环病毒(PCV)、猪细小病毒(PPV)阳性血清时结果均为阴性;当CSFV阳性血清稀释至1∶640时结果仍为阳性,表明该检测方法具有良好的敏感性;与IDEXX CSFV抗体检测试剂盒相比,E0-ELISA检测符合率为92.00%,敏感性为97.86%,特异性为78.33%。综上,成功建立一种经济、稳定、特异性好和敏感性高的CSFV血清抗体间接ELISA检测方法。(本文来源于《河南农业科学》期刊2019年11期)

胡永新,赵永刚,张永强,刘拂晓,樊晓旭[3](2019)在《表达非洲猪瘟病毒P72蛋白复制缺陷型重组腺病毒的构建及鉴定》一文中研究指出本研究旨在构建能够表达非洲猪瘟病毒(ASFV)P72蛋白的缺陷型重组腺病毒。参考ASFV China-SY18株的基因序列,合成B646L基因。先将合成的B646L基因通过TOPO连接克隆到过渡载体pENTR/D-TOPO中;再将插入B646L基因的过渡载体pENTR/D-TOPO-ASFV-P72与pAd/CMV/V5-DEST腺病毒骨架载体进行重组,得到pAd-ASFV-P72重组质粒;重组质粒经PacⅠ酶切线性化后转染293A细胞,连续传代后获得重组腺病毒。结果表明,获得的Ad5-ASFV-P72重组腺病毒的滴度为2.53×10~9 IFU·mL~(-1);经免疫荧光方法及Western blot鉴定ASFV-P72蛋白在Vero细胞中成功表达,且能够与ASFV标准阳性血清发生特异性反应。本研究成功获得能够表达ASFV P72蛋白的重组腺病毒Ad5-ASFV-P72,不仅为ASFV多基因重组腺病毒载体疫苗的研制奠定了一定基础,还为ASFV相关血清学诊断方法的建立提供了安全有效的抗原。(本文来源于《畜牧兽医学报》期刊2019年08期)

银梅,李鹏,岳锋,张秋雨,胡东方[4](2019)在《猪瘟病毒E2蛋白配体表位的筛选与鉴定》一文中研究指出为进一步精确定位猪瘟病毒(CSFV)E2蛋白配体表位信息,利用DNASIS(Ver.2.5)软件分析设计合成7条多肽,主要覆盖E2蛋白,分别命名为SE21、SE22、SE231、SE232、SE241、SE242、SE03,同时设计合成1条无关多肽CP,均标记FITC。将PK-15细胞作为靶细胞,通过多肽与PK-15细胞结合试验、多肽抑制CSFV感染PK-15细胞试验和CSFV阻断多肽与PK-15细胞结合试验,筛选和鉴定E2蛋白配体表位。结果表明,多肽SE241、SE242与PK-15细胞结合的平均荧光强度分别为74.43±4.59和83.60±3.11,显着高于其他多肽,抑制CSFV感染PK-15细胞的感染抑制率也显着高于其他多肽,同时这2条多肽与PK-15细胞的结合被CSFV有效阻断。证实SE241、SE242多肽为CSFV与靶细胞PK-15细胞结合的配体表位,并能抑制CSFV感染PK-15细胞。本试验为CSFV新型多肽疫苗或免疫佐剂的研制提供依据。(本文来源于《中国兽医学报》期刊2019年06期)

郭晶,李重阳,孟庆玲,乔军,伍晔晖[5](2019)在《非洲猪瘟病毒多表位融合蛋白P72的构建、表达及免疫学特性研究》一文中研究指出非洲猪瘟是由非洲猪瘟病毒(ASFV)引起的一种烈性传染病,对中国猪养殖产业的发展存在巨大的潜在威胁。为了建立有效的检测手段来防控ASFV的流行,本试验以GenBank中ASFV基因组序列为基础,运用在线软件对ASFV结构蛋白P72的优势线性抗原表位进行预测分析,利用预测结果分析合成多表位融合基因P72 (MeP72)。再将MeP72经pMD19-T克隆后插入到原核表达载体pET-32a(+)中得到重组质粒pET-MeP72,双酶切验证在402 bp及5 000 bp以上有条带,证明重组质粒构建成功。转化重组质粒pET-MeP72至大肠杆菌感受态细胞E.coli BL21 (DE3),用IPTG诱导表达并优化诱导条件,分析重组蛋白反应原性。SDS-PAGE检测结果显示,MeP72重组蛋白的分子质量为30.74 kDa;Western blot分析显示MeP72重组蛋白可被ASFV阳性血清特异性识别,表明其反应原性良好;小鼠免疫试验证实MeP72蛋白可诱导机体产生特异性抗体,具有良好的免疫原性。研究表明MeP72重组蛋白可在大肠杆菌中高效表达,并诱导机体产生特异性抗体,为诊断抗原的研发奠定了前期基础。(本文来源于《家畜生态学报》期刊2019年06期)

张越秀[6](2019)在《E3泛素连接酶RNF114通过泛素化降解NS4B蛋白抑制猪瘟病毒复制》一文中研究指出猪瘟是一种猪的烈性传染病,其病原体猪瘟病毒(CSFV)属于黄病毒科瘟病毒属成员。蛋白质的泛素化修饰是一种重要而广泛的修饰过程,参与细胞内许多生理过程。宿主利用泛素化修饰抵抗病毒的感染,而病毒利用泛素化修饰介导免疫逃逸。目前,文献相继报道,蛋白质的泛素化修饰参与黄病毒科病毒的生命周期。前期,本实验室将表达萤火虫荧光素酶的报告病毒(rCSFV-Fluc)感染过表达猪源干扰素刺激基因(ISGs)的PK-15细胞系,筛选到E3泛素连接酶RNF114(ZNF313)为一种潜在的抗CSFV宿主分子,但其抗病毒机制尚不清楚。本研究旨在证实猪源RNF114(pRNF114)的抗CSFV活性,并解析其抑制CSFV复制的分子机制。我们检测了CSFV感染过程中pRNF114的表达情况,结果表明,在CSFV-SM株感染猪的外周血单个核细胞(体内)以及CSFV感染的PK-15、肺泡巨噬细胞和外周血单个核细胞(体外)中,RNF114的mRNA水平随着CSFV感染时间、感染剂量的增加而上调,说明pRNF114参与调控CSFV的复制。在pRNF114抗病毒功能方面:我们将不同剂量(MOI=0.01和0.1)的rCSFV-Fluc或CSFV-SM株感染过表达pRNF114的PK-15细胞系(PK-pRNF14),感染24和48 h后,从荧光素酶活性、病毒滴度和基因组拷贝数3个方面评价CSFV的复制水平,结果表明,过表达pRNF114抑制CSFV的复制;相反,用CSFV感染敲除RNF114的PK-15细胞系(PK-RNF14-KO),在感染后24和48 h检测CSFV复制水平,结果表明,敲除内源性RNF114促进CSFV复制。过表达及敲除试验均证实,pRNF114是一种抗CSFV宿主分子。在pRNF114抗CSFV分子机制方面:首先,我们构建了pRNF114(C64/67A)突变体,并用体外泛素化试验证实,pRNF114(C64/67A)缺失E3泛素连接酶活性;CSFV感染PK-pRNF114(C64/67A)细胞系后,结果表明,pRNF114(C64/67A)不能抑制CSFV复制,说明pRNF114抑制CSFV复制依赖其E3泛素连接酶活性;其次,通过免疫共沉淀(Co-IP)筛选到pRNF114与CSFV NS4B蛋白存在直接的相互作用,且证实pRNF114通过蛋白酶体途径降解NS4B蛋白;最后,我们构建了不同位点赖氨酸突变的泛素突变体,证实pRNF114催化NS4B蛋白发生K27连接的聚泛素化修饰。综上所述,我们证实,pRNF114是一种抗CSFV宿主分子;并阐明pRNF114抗CSFV复制的机制:pRNF114介导NS4B蛋白发生K27连接的聚泛素化修饰,促进NS4B蛋白经蛋白酶体途径降解,进而发挥抗CSFV作用。(本文来源于《中国农业科学院》期刊2019-06-01)

刘兆善[7](2019)在《猪瘟病毒多样性分析及2.1d亚型E2蛋白免疫原性研究》一文中研究指出猪瘟(Classical swine fever,CSF)是由猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起猪的一种高度接触性、致死性的传染病,是能造成养猪行业重大损失的一种烈性疾病。目前规模化养殖场采用猪瘟兔化弱毒疫苗C株进行全群普免,虽然C株疫苗对猪瘟的防控发挥了巨大作用,但是近年来全国各地陆续报道了部分规模化养殖场免疫疫苗后仍然爆发猪瘟的临床案例。本文针对规模化猪场进入休药期后,生猪出现咳嗽、气喘、呼吸困难等临床症状,深入屠宰场采集不同来源的叁组96份猪肺脏,采用PCR进行病原微生物检测,结果表明,肺部病原微生物为猪圆环病毒2型(感染率68.75%),猪肺炎支原体(感染率为36.46%)、猪链球菌2型(感染率为11.46%)为主,其次是猪瘟病毒(感染率3.13%)和猪繁殖与呼吸综合征病毒(感染率2.08%)。采用28分制计分标准对叁个组的肺脏进行计分,发现叁组肺脏的平均分从1.0~2.2不等,说明屠宰场的猪肺脏存在一定程度的病原微生物感染。随机选取3组肺脏标本经制作切片、染色以及显微镜检查,观察肺组织的病理变化。结果显示,各组肺部都有炎性细胞浸润,肺泡壁増厚至出血性巩固等病变。与临床症状、PCR检测和肺脏计分结果相符。2016-2017年,收集了山东省不同地区12个大型农场的103例临床疑似猪瘟病毒感染样本。共分离并检测到11只猪朊病毒,均属于2.1 d亚组。序列分析发现在E2蛋白的主要中和抗原区(B/C)存在15个高频变异位点(3,20,31,49,90,108,156,165,174,192,212,235,253,270,336)以及2个氨基酸保守位点(56,182)。血清中和试验结果表明,不同基因型猪瘟病毒的血清中和抗体滴度均有显着差异。针对HCLV疫苗株的HCLV株(1.1亚型)免疫血清的中和滴度为256。而对SDWF-2016株(2.1 d亚型)的中和效价仅为16;针对SDWF-2016菌株的SDWF-2016免疫血清的中和滴度为128,而HCLV菌株的中和滴度仅为16。该结果表明,传统的C株疫苗(即HCLV疫苗)不能对新出现的2.1 d亚型菌株提供全面保护,为近年来部分猪场虽然广泛免疫疫苗但仍有CSF疫情发生提供了合理解释。2016年从山东某爆发猪瘟的养猪场分离获得SDWF-2016株(2.1d亚型),构建原核系统表达其E2蛋白。选择6只健康的35日龄仔猪,随机分为两组:对照组颈部肌肉接种2 mL DMEM,免疫组颈部肌肉接种乳化制备的2 mL E2蛋白疫苗,免疫14天后,将卟啉的强毒株用于攻击,并且且在攻击后15天对所有存活的猪进行尸检。观察每个组织器官损伤并测定血清样品的ELISA抗体和中和抗体。结果显示,对照组ELISA抗体阳性率为0,中和抗体平均值为10。免疫组ELISA抗体阳性率为100%,中和抗体滴度≥1448。动物免疫激发试验结果表明,经典猪瘟病毒2.1d亚型的E2蛋白具有良好的免疫原性。能够有效地保护猪瘟病毒石门强毒株的攻毒,将来可以作为潜在的亚单位疫苗进行开发。(本文来源于《山东大学》期刊2019-05-22)

王晓丽,孙蕾,刘文军,商营利[8](2019)在《非洲猪瘟病毒编码蛋白功能研究进展》一文中研究指出非洲猪瘟(African swine fever,ASF)是非洲猪瘟病毒(African swine fever virus,ASFV)感染家猪或野猪引起的一种急性、出血性、高度接触性传染病,其特征是病程短、高热和出血性病变,急性感染死亡率高达100%,严重威胁全球养猪业但目前尚未开发出有效的疫苗和治疗方法。ASFV是非洲猪瘟病毒科非洲猪瘟病毒属的唯一成员,为大型双链DNA病毒,主要在巨噬细胞胞质中复制,其基因组约170-193kb,含有150-167个开放阅读框,编码150-200种蛋白质。目前已知功能的病毒编码蛋白约有50个,大部分为病毒的结构蛋白,仍有一半以上的ASFV编码蛋白功能尚不清楚。除结构蛋白以外,病毒含有完整的酶和与病毒转录有关的因子,编码调节宿主细胞功能及与病毒免疫逃逸相关的蛋白等。本文综述了ASFV的结构蛋白、非结构蛋白以及参与免疫逃逸等相关蛋白功能的研究进展,以期为ASFV病毒蛋白研究及疫苗研发提供相关借鉴。(本文来源于《微生物学通报》期刊2019年07期)

王西西[9](2019)在《非洲猪瘟病毒蛋白对cGAS-STING信号通路抑制作用研究》一文中研究指出非洲猪瘟病毒(African swine fever virus,ASFV)是核质巨DNA病毒,可感染家猪和欧洲野猪等,其发病率和死亡率可达100%。自2018年8月我国出现首例非洲猪瘟(African swine fever,ASF)病例,疫情目前已经蔓延至31个省份或地区,防控形势严峻。ASFV拥有庞大的基因组结构和复杂的免疫逃逸机制,使得该病仍未有商品化疫苗问世。环鸟苷酸-腺苷酸合成酶(Cyclic GMP-AMP synthase,cGAS)是近期发现的DNA胞质模式识别受体,在激活宿主天然免疫、调控适应性免疫中发挥重要作用。cGAS能够识别并结合存在于胞质中DNA,催化合成环化GMP-AMP(cyclic GMP-AMP,cGAMP),后者结合并活化干扰素刺激因子(Stimulator of interferon gene,STING),STING招募TBK1激活IRF3和NF-κB,介导Ⅰ型干扰素和促炎性因子的转录表达。cGAS-STING介导的抗病毒反应是研究热点之一,本文初步筛选具有抑制cGAS-STING信号通路功能的ASFV蛋白并探讨其作用机制,为研发安全有效的ASFV疫苗提供理论支撑。全文研究内容概括如下:1、ASFV Georgia 2007株多基因家族免疫抑制基因筛选:已有研究表明,ASFV部分多基因家族(Multigene family,MGF)蛋白能够抑制I型干扰素表达,拮抗其介导的抗病毒效应。因此我们初步筛选ASFV Georgia 2007的43个MGF基因,发现11个基因抑制cGAS-STING刺激的IFN-β或NF-κB启动子活性。进一步对ASFV-G-ΔMGF缺失的MGF基因功能进行验证,发现免疫抑制基因MGF360-12L、MGF360-13L和MGF505-2R均能抑制PAM和PK-15中IFN-βmRNA水平,其中MGF360-12L抑制作用相对较强。2、MGF360-12L蛋白抑制cGAS-STING介导的抗病毒天然免疫机制研究:试验表明,MGF360-12L能够抑制cGAS/STING刺激的IFN-β和NF-κB启动子活化,能够抑制TBK1或IRF3-5D介导的IFN-β和ISRE启动子激活,并抑制外源性TBK1和IRF3-5D蛋白的表达。此外,MGF360-12L显着抑制由TBK1或IKKβ而非p65过表达诱导的NF-κB启动子活化,抑制外源性TBK1和IKKβ蛋白表达水平和mRNA水平。对JAK-STAT信号通路研究结果表明,MGF360-12L蛋白能抑制IFN-β介导抗病毒效应,促进VSV-GFP的增殖。进一步研究表明,MGF360-12L可通过降低IRF9总蛋白水平抑制IFN-β介导JAK-STAT信号通路。3、DP96R蛋白抑制cGAS-STING介导的抗病毒天然免疫的机制研究:DP96R是ASFV毒力基因之一,但其作用机制仍然未知。本研究中,我们发现DP96R抑制cGAS/STING、TBK1而非IRF3-5D介导IFN-β和ISRE启动子激活,抑制cGAS/STING、TBK1、IKKβ而非p65诱导的NF-κB启动子的活化。此外,DP96R抑制由cGAS-STING共表达刺激的内源性TBK1、IRF3磷酸化水平,抑制外源性TBK1的蛋白表达水平,同时抑制TBK1过表达诱导的抗病毒反应。最后,截短突变分析表明,DP96R C端的30至96位氨基酸是其免疫抑制活性区域。综上,本文初步研究了ASFV MGF360-12L和DP96R蛋白抑制cGAS-STING信号通路的作用机制,为进一步阐明病毒免疫逃逸机制,研发安全有效的ASFV疫苗提供借鉴与参考。(本文来源于《中国农业科学院》期刊2019-05-01)

余丽君[10](2019)在《胶乳增强免疫比浊法定量检测猪瘟病毒E2蛋白方法的建立和应用》一文中研究指出猪瘟(Classical swine fever,CSF)在全世界范围内流行,患病猪主要表现为全身有出血点或出血斑,脏器有梗死灶,由此造成的猪只病死率高达90%,严重危害养猪产业。目前控制猪瘟的措施仍是以疫苗接种为主,猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)E2蛋白作为CSFV的主要保护性抗原,是新型疫苗研发的研究热点。蛋白含量检测是猪瘟病毒E2蛋白亚单位疫苗半成品质量控制的关键,然而常规的蛋白定量检测方法都是针对溶液中总蛋白的检测,无法针对目的蛋白进行准确定量。为了解决这一难题,本课题利用针对CSFV E2蛋白的不同抗原表位的单克隆抗体,建立了针对CSFV E2蛋白的胶乳增强免疫比浊法(Latex nanoparticle-enhanced turbidimetric immunoassay,LTIA)。该方法能够特异性检测样品中的目的蛋白,且简单、快速。本研究首先将实验室已筛选的3株CSFV E2蛋白单克隆抗体(15A9、14F12和12H12)的杂交瘤细胞株复苏,制备腹水,通过间接免疫荧光(IFA)测定其效价。利用G蛋白亲和层析法对腹水进行纯化,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)和二喹啉甲酸(BCA)法分别鉴定其纯度和浓度。然后采用双抗体夹心ELISA法初步对CSFV E2蛋白单克隆抗体进行配对筛选,再使用胶乳增强免疫比浊法进行单克隆抗体配对复筛,从而确定最佳的单抗配对进行后续实验。为进一步提高检测方法的灵敏度和准确性,将建立好的胶乳增强免疫比浊法进行反应条件和体系的优化。根据上述获得的最优条件组装胶乳增强免疫比浊法定量检测猪瘟病毒E2蛋白试剂盒,并确定了该试剂盒的检测线性范围和标准曲线,验证了其最低检出限、准确度和精密度。最后收集CHO细胞系统表达的CSFV E2蛋白样品,分别用SDS-PAGE、BCA法和本实验所建立的LTIA方法检测,并进行方法学比较。研究结果表明,使用CSFV E2蛋白单克隆抗体12H12和15A9配对标记胶乳微球,粒径为150 nm的胶乳粒子以及10:1的单克隆抗体标记比例时,该方法标准曲线的线性更好。该方法的反应体系为150μL的样品稀释液(R1),5μL的CSFV E2蛋白标准品,50μL的已进行抗体标记的胶乳粒子溶液(R2)以及200 s的反应时间。此外,该试剂盒的检测范围为25μg/mL~0.5 mg/mL,回收率范围为91%~100%,批内变异系数小于15%,批间变异系数小于10%。该方法对未纯化CSFV E2蛋白样品的检测结果与BCA法和SDS-PAGE法的检测结果趋势一致,满足其对样本的检测要求。(本文来源于《西北农林科技大学》期刊2019-05-01)

猪瘟病毒蛋白论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

为建立一种经济、可靠的猪瘟病毒(CSFV)血清抗体检测方法,采用间接ELISA(E0-ELISA)方法,以在大肠杆菌(Escherichia coli)中表达的重组蛋白E0为包被原,优化反应条件。结果显示,优化后的E0-ELISA在包被原1.0μg/mL质量浓度下37℃包被1 h效果最佳,最佳封闭条件为5%脱脂奶粉溶液37℃作用2 h,待检血清以1∶100稀释后37℃作用60 min效果最佳,二抗以1∶5 000稀释后37℃孵育45 min效果最佳。当OD_(450)<0.370时,判断为猪血清CSFV抗体阴性;批内和批间重复试验变异系数分别为1.99%~7.69%和2.16%~9.23%,表明该方法具有良好的稳定性;E0-ELISA检测猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪伪狂犬病毒(PRV)、猪圆环病毒(PCV)、猪细小病毒(PPV)阳性血清时结果均为阴性;当CSFV阳性血清稀释至1∶640时结果仍为阳性,表明该检测方法具有良好的敏感性;与IDEXX CSFV抗体检测试剂盒相比,E0-ELISA检测符合率为92.00%,敏感性为97.86%,特异性为78.33%。综上,成功建立一种经济、稳定、特异性好和敏感性高的CSFV血清抗体间接ELISA检测方法。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

猪瘟病毒蛋白论文参考文献

[1].吴锐,潘兹书.猪瘟病毒Core蛋白核仁定位序列鉴定[J].微生物与感染.2019

[2].郭东光,陈明艳,朱艳平,李鹏,岳锋.猪瘟病毒结构蛋白E0抗体间接ELISA检测方法的建立及优化[J].河南农业科学.2019

[3].胡永新,赵永刚,张永强,刘拂晓,樊晓旭.表达非洲猪瘟病毒P72蛋白复制缺陷型重组腺病毒的构建及鉴定[J].畜牧兽医学报.2019

[4].银梅,李鹏,岳锋,张秋雨,胡东方.猪瘟病毒E2蛋白配体表位的筛选与鉴定[J].中国兽医学报.2019

[5].郭晶,李重阳,孟庆玲,乔军,伍晔晖.非洲猪瘟病毒多表位融合蛋白P72的构建、表达及免疫学特性研究[J].家畜生态学报.2019

[6].张越秀.E3泛素连接酶RNF114通过泛素化降解NS4B蛋白抑制猪瘟病毒复制[D].中国农业科学院.2019

[7].刘兆善.猪瘟病毒多样性分析及2.1d亚型E2蛋白免疫原性研究[D].山东大学.2019

[8].王晓丽,孙蕾,刘文军,商营利.非洲猪瘟病毒编码蛋白功能研究进展[J].微生物学通报.2019

[9].王西西.非洲猪瘟病毒蛋白对cGAS-STING信号通路抑制作用研究[D].中国农业科学院.2019

[10].余丽君.胶乳增强免疫比浊法定量检测猪瘟病毒E2蛋白方法的建立和应用[D].西北农林科技大学.2019

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