导读:本文包含了拟南芥基因启动子论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:苦豆子,赖氨酸脱羧酶,SaLDC启动子,表达分析
拟南芥基因启动子论文文献综述
陆姗姗,洪园淑,刘萍[1]（2019）在《苦豆子赖氨酸脱羧酶基因启动子在拟南芥中的表达分析》一文中研究指出赖氨酸脱羧酶(LDC)基因是苦豆子中氧化苦参碱(OMA)生物合成的第一个关键酶基因。在已有苦豆子赖氨酸脱羧酶基因(SaLDC)基础上克隆得到该基因上游1260 bp的启动子序列,GenBank登录号为KY038928,前期在苦豆子愈伤组织中的瞬时表达研究显示该启动子具有启动活性。生物信息学分析发现该启动子区域除了拥有启动子区的基本顺式作用元件TATA-box和CAAT-box外,还具有多个与光信号、逆境应答等相关的顺式作用元件。为进一步研究SaLDC启动子的功能,构建了该启动子与β-葡萄糖苷酸酶(GUS)报告基因融合的植物表达载体并通过农杆菌介导遗传转化拟南芥,同时对光诱导和聚乙二醇(PEG)胁迫的转基因拟南芥进行GUS活性染色和定量分析。结果显示,在T_2代转基因拟南芥幼苗的不同生长阶段和成株的各组织器官中均可检测到GUS酶活性,且随幼苗生长时间的延长,叶片中的表达活性下降;在成株叶片和花萼中的表达活性强于根、茎、花瓣和角果。光和PEG胁迫均能诱导转基因拟南芥中GUS的表达;GUS酶活性定量测定显示,短时间的PEG胁迫(1～2 h)GUS酶活性显着上调(P<0.05),而连续胁迫8 h时GUS酶活性下调至最低(P<0.01),比胁迫前下降了28.2%。以上结果表明SaLDC启动子既有时空表达特异性又有组织表达特异性,光诱导和干旱胁迫对结构基因的表达有重要的调控作用。(本文来源于《草业学报》期刊2019年11期）
刘晓柱,李银凤[2]（2019）在《拟南芥AtSWEET4基因启动子序列、编码蛋白结构分析及其在病原菌胁迫下表达特性检测》一文中研究指出【目的】分析拟南芥糖运输载体蛋白基因(AtSWEET4)启动子序列及其编码蛋白的结构,并检测病原菌胁迫下AtSWEET4基因的表达特性,为研究AtSWEET4蛋白在拟南芥生长发育和生物胁迫中的作用机制提供理论依据。【方法】采用生物信息学方法分析AtSWEET4基因启动子序列及其编码蛋白的结构,并采用实时荧光定量PCR(qRTPCR)和β-葡萄糖苷酸酶(GUS)组织染色法检测人工接种菜豆晕疫病菌(Pseudomonas syringae pv. phaseolicola,Psp)NPS3121和丁香假单胞菌番茄致病变种(Pseudomonas syringae pathovar tomato,Pst)DC3000后AtSWEET4基因的表达情况。【结果】AtSWEET4蛋白由251个氨基酸组成,分子量为27.8 kD,分子式为C1300H2038N304O346S11,理论等电点(pI)为8.71,脂肪氨基酸指数为118.76,不稳定指数为38.72,平均亲水性指数为0.629,为稳定的亲水蛋白,且含有7个跨膜结构域,无信号肽,为非分泌型蛋白。AtSWEET4蛋白与芥属的亚麻荠和荠菜SWEET4蛋白亲缘关系最近,其次是十字花科的甘蓝和萝卜SWEET4蛋白,与禾本科的二穗短柄草SWEET4蛋白亲缘关系最远。AtSWEET4基因启动子序列中包含核心元件TATA-box、增强子元件CAAT-box、调控植物生长发育相关元件、激素响应相关元件、非生物胁迫响应相关元件和生物胁迫响应相关元件。Psp NPS3121和Pst DC3000均可诱导AtSWEET4基因表达,但表达模式不同:接种Psp NPS3121后6和12 h的AtSWEET4基因表达明显上调,但至接种后24 h又迅速下降;接种Pst DC3000后AtSWEET4基因表达量逐渐增加。【结论】AtSWEET4基因的启动子序列特征及其编码蛋白结构与其参与植物免疫反应密切相关。(本文来源于《南方农业学报》期刊2019年09期）
罗箫,甘爽,谢国莉,郭晋雅,蔡易[3]（2019）在《拟南芥免疫相关基因启动子对免疫信号分子的响应强度分析》一文中研究指出为对比不同的植物抗病相关基因对植物免疫激发子的响应强度,筛选出响应强度较高的报告基因,从拟南芥中克隆5个植物免疫相关基因(WRKY33、FRK1、WRKY29、PR2和PDF1.2)的启动子序列,构建目的基因启动子驱动的萤光素酶(Luciferase,LUC)表达载体,并将其转化到拟南芥原生质体中瞬时表达;经植物免疫激发子(FLG22与PEP1)处理后,进行LUC活性检测,判断目的基因启动子的激活情况,分析上述目的基因启动子对免疫信号分子的响应强度。结果显示:经FLG22与PEP1处理后,拟南芥原生质体细胞中WRKY33响应强度为最高,与对照相比分别上调11.2与4.5倍,WRKY29响应强度次之,分别为对照的10.0与3.1倍;与WRKY相比,FRK1响应强度明显降低,而PR2与PDF1.2均无明显响应。上述结果表明在拟南芥原生质体瞬时表达体系中WRKY33可高效响应植物免疫激发子,pWRKY33::LUC原生质体表达体系可作为一种高效的PTI反应报告系统,用于新型植物免疫激发子的筛选鉴定。(本文来源于《中国农业大学学报》期刊2019年06期）
王雪[4]（2019）在《拟南芥甘露糖结合凝集素基因At3g21380启动子功能初析》一文中研究指出高等植物的生长发育是基因选择性表达的结果,而基因的表达受到启动子的调控。启动子如同“开关”一样,决定了基因的活动。一旦启动子活性出现异常,通常会导致基因表达的调节障碍,进而可能导致植物生长发育异常。目前的研究尽管获得了许多具备组织特异性或诱导活性的植物启动子,但是真正适于某个特定遗传改良目的的启动子数量并不多或活性不高。因此植物基因组中潜在的启动子还有待分析和鉴定。Tair网站(http://www.arabidopsis.org/)上提供的基因注释信息显示拟南芥At3g21380基因是甘露糖结合凝集素(Mannose-binding lectin superfamily protein,MBL)的编码基因。在本研究中,我们将At3g21380基因暂命名为AtMBL1基因。利用在线网站对该基因的基因表达数据进行分析,发现AtMBL1基因是一个种子特异性表达基因,因此推测AtMBL1启动子是种子特异性表达启动子。首先克隆了AtMBL1启动子,然后将其酶切,连接至植物表达载体上。通过农杆菌介导的浸花法将植物表达载体侵染转化野生型拟南芥。待种子成熟后收获种子,然后将收获的种子撒在含有潮霉素的筛选培养基上进行逐代筛选,最终获得不再发生性状分离的T3代纯合株系。利用GUS组织化学染色法对AtMBL1启动子的组织表达模式进行分析。研究结果证实AtMBL1启动子能够驱动外源基因在种子部位特异性的表达。然后基于AtMBL1启动子的全长序列的分析,设计了一系列5'端缺失启动子的引物,克隆了叁个缺失片段。接下来成功构建了叁个缺失片段的植物表达载体,并侵染转化野生型拟南芥然后筛选至转基因纯合株系。GUS组织化学染色分析表明,所有缺失片段均能驱动GUS报告基因在转基因拟南芥的种子中表达。本论文的主要实验结果如下:(1)AtMBL1启动子表达载体的构建。根据Tair网站上提供的拟南芥AtMBL1基因上游碱基序列,利用Primer 5.0软件,设计AtMBL1启动子的PCR反应引物,进行PCR扩增。将扩增产物酶切连接到植物表达载体pGFPGUSplus上,转化到大肠杆菌DH5α菌株,利用菌落PCR和酶切鉴定初步验证阳性克隆,最后经过测序结果比对,表明成功构建了AtMBL1启动子的植物表达载体,将其命名为pMBL1-GUS。通过农杆菌介导的浸花法将pMBL1-GUS侵染转化野生型拟南芥。通过多代筛选获得纯合株系。(2)AtMBL1启动子序列分析。使用在线分析软件如PLACE和PlantCARE,对AtMBL1启动子的序列进行分析,鉴定出很多与种子特异性表达相关的调控元件。包括RY元件(CATGCA)、ACGT元件、ACGTCA元件、as-1元件(TGACG)、GCN4元件(TGAGTCA)、skn-1基序(GTCAT)、AACA元件(AACAAAA)等。(3)AtMBL1启动子各缺失序列的克隆载体的构建。基于AtMBL1启动子的序列分析结果,设计5'端系列缺失引物。后经PCR扩增,获得了3个长度依次为621bp、514bp以及351bp的缺失片段,将这叁个缺失片段依次命名为△MBL1、△MBL2以及△MBL3。将纯化后的扩增产物克隆到pEASY-Blunt Cloning Kit载体中,且转化至大肠杆菌DH5α菌株中。利用菌落PCR和双酶切的电泳结果,初步筛选阳性克隆,最后进行测序比对。测序结果表明叁个缺失片段的克隆载体均构建成功,按照其片段长度从大到小依次命名为MBL1P-1,MBL1P-2以及MBL1P-3。(4)AtMBL1启动子各缺失序列的表达载体的构建。将缺失序列的克隆载体酶切后,电泳回收目的片段,将目的片段连接到pGFPGUSplus载体上。利用菌落PCR和双酶切的电泳结果,初步筛选阳性克隆。最后经过测序比对,结果表明叁个缺失片段的植物表达载体均已构建成功。按照缺失片段长度从大到小依次命名为p△MBL1-GUS、p△MBL2-GUS以及p△MBL3-GUS。通过农杆菌介导的浸花法将缺失启动子的植物表达载体转化野生型拟南芥。通过筛选最终获得缺失序列的纯合株系。(5)AtMBL1启动子是种子特异性表达启动子。利用X-Gluc溶液对筛选获得的AtMBL1启动子的转基因纯合株系进行GUS组织化学染色,检测时期包括种子期,幼苗期,花期以及角果期。染色结果表明AtMBL1启动子可以驱动基因表达,而且能够有效地驱动GUS报告基因在拟南芥种子中特异的表达。(6)AtMBL1启动子各缺失序列的GUS组织化学染色。结果显示AtMBL1启动子和缺失系列均可驱动下游GUS报告基因在拟南芥种子中表达,说明它们均具备启动基因转录的活性。△MBL3仍能够驱动下游GUS报告基因的表达,是AtMBL1启动子发挥调控作用的关键区段。推测种子特异性表达元件主要存在于△MBL3中。所缺失的各部分序列不能使启动子失去活性,但这些序列中的元件对基因表达是否起促进或抑制作用、各个元件之间的相互作用关系以及各元件调控启动子活性的分子机制还需要通过启动子定点突变、酵母单杂交以及凝胶阻滞分析等实验来验证。(本文来源于《曲阜师范大学》期刊2019-03-26）
王立光,陈军,李静雯[5]（2019）在《拟南芥AtNHX6基因启动子的克隆及表达分析》一文中研究指出为了探明拟南芥内膜反向转运体AtNHX6基因的组织表达模式,从基因组中克隆了AtNHX6基因开放阅读框(ORF)上游侧翼调控区1 922bp序列,并成功构建AtNHX6基因启动子与GUS融合表达载体pCAM-BIA1381-proNHX6-GUS,通过农杆菌花序浸染法转化野生型拟南芥获得T3代纯合转基因拟南芥株系,经PCR检测扩增得到2 187bp目的条带。利用组织染色法鉴定转基因拟南芥的GUS表达模式发现,在子叶、下胚轴和花中GUS活性显着。在这些广泛表达的部位中,微管系统中的表达最为显着,真叶中只有局部检测到GUS表达;在根中GUS在根毛和侧根生长部位表达;在未成熟果荚中只有在果荚顶端和基部存在GUS活性,成熟果荚中只在果柄检测到GUS表达;在花中,雄蕊的花丝和花粉粒及雌蕊的柱头中检测到GUS表达。GUS染色分析结果表明,AtNHX6基因启动子与GUS的融合表达载体成功构建并正常启动GUS基因表达,且AtNHX6基因主要在拟南芥的子叶、下胚轴、根、花、果荚中的微管系统、根毛和侧根生长部位以及花丝、花粉、柱头中表达。(本文来源于《西北植物学报》期刊2019年02期）
张丛,来佳佳,王婷婷,邰付菊[6]（2018）在《ZmCBL1和ZmCBL9启动子在转基因拟南芥中的活性分析》一文中研究指出为探明ZmCBL1和ZmCBL9在玉米中的表达调控及功能的差异,克隆了ZmCBL1和ZmCBL9的启动子区域。PlantCARE分析显示,2个启动子中含有多个响应干旱、光照、ABA等的顺式调控元件;GUS活性分析显示ZmCBL1和ZmCBL9不受低温胁迫的诱导,而受甘露醇、黑暗和ABA处理的诱导,但其表达强弱稍有不同;ZmCBL1和ZmCBL9对GA3和损伤处理的响应也存在差异,这与它们序列中存在着不同的调控元件有关。除了在某些胁迫诱导下的表达存在差异外,这2个启动子在器官(组织)和发育阶段中的表达也具有差异,仅ZmCBL1的启动子在花丝和柱头中表达。本研究结果暗示在不同逆境胁迫及发育阶段,ZmCBL1和ZmCBL9的功能可能存在一定的冗余,但也存在明显的差异。(本文来源于《华中农业大学学报》期刊2018年04期）
张婷[7]（2018）在《马铃薯Patatin启动子及其前导肽序列在转基因拟南芥中的表达特性研究》一文中研究指出Patatin是一组分子量约40 k Da的马铃薯块茎专一性蛋白,通常有糖基化修饰,其含量可占到马铃薯块茎总可溶性蛋白的40%左右。Patatin启动子赋予其编码基因的块茎专一性表达,是一个强启动子。在高浓度蔗糖的诱导下,Patatin启动子也能启动下游基因在马铃薯植株的其它部位表达。早期依据Patatin编码基因的5’-端非翻译区有无插入序列将其分为两大类:Class I在其5’-端非翻译区无22bp的插入序列;Class II在其5’-端非翻译区有22 bp的插入序列。Class I Patatin最初的23个氨基酸残基被推测为其信号肽,但未有实验证明。据此,本实验室前期的研究生构建了Class I Patatin启动子驱动的GUS(p05质粒)和23aa-GUS(p06质粒)载体并对马铃薯进行了遗传转化,但转基因马铃薯的GUS表达信号很弱。对此,我们测试了上述构建在转基因拟南芥中的表达特点,结果如下:1.已有转基因拟南芥植株的分子鉴定及RT-PCR检测转录水平分析。本实验研究生前期将p05质粒转化拟南芥获得2株Pro Patatin::GUS植株,命名为At G-1与At G-2。将p06质粒转化拟南芥获得6株Pro Patatin::23aa-GUS转化株,命名为At SG-1~At SG-6。经PCR扩增及扩增产物测序,上述2株p05质粒转化株系均为p06质粒转化而来,分别更名为At G-1→At SG-7、At G-2→At SG-8(本论文中均使用了更正后的株系名)。RT-PCR检测结果表明,野生型无条带,At SG系列8株转化株都显示出专一条带,其中At SG-1与At SG-3较弱,At SG-2、At SG-4~At SG-8条带较强。说明p06质粒遗传转化获得的8株At SG转基因株系均有GUS基因的表达。2.Pro Patatin::GUS、Pro Patatin::23aa-GUS的重新构建及Pro35s::23aa的构建。为验证Patatin最初的23个氨基酸残基是否为信号肽序列并定位Patatin的亚细胞部位,我们双酶切Pro Patatin::GUS、Pro Patatin::23aa-GUS载体获得了Pro Patatin和Pro Patatin::23aa两个DNA片段,又扩增出Pro35s::23aa DNA片段,插入至含有GFP基因的植物遗传转化载体p CAMBIA-1304。重组质粒p1304-Gus、p1304-SGus和p1304-SP经测序核实分别插入了Pro Patatin、Pro Patatin::23aa和Pro35s::23aa,即形成了新的重组片段Pro Patatin::GFP-GUS、Pro Patatin::23aa-GFP-GUS和Pro35s::23aa-GFP-GUS。3.转基因拟南芥At SG植株GUS基因表达的蛋白水平分析。分别选取哥伦比亚野生型、转基因At SG-2与At SG-7株系受高糖诱导生长13天的幼苗,各自称重70 mg,蛋白简易提取法粗提蛋白。一抗使用美国Sigma公司小鼠抗His-tag单克隆抗体(YB30401ES10),二抗使用碧云天生物公司辣根过氧化物酶标记山羊抗小鼠Ig G(H+L)(A2016)单克隆抗体。Western Blotting结果显示两条清晰的蛋白带,分子量分别在65~70KD、70~75KD之间,与理论上切割/未切割信号肽后含组氨酸标签GUS蛋白分子量69.5KD、72.2KD相符。认为可能是信号肽在参与跨膜运输时会被切割,从而产生两条不同分子量的条带,一条为切割前的分子量条带,一条为切割了信号肽后的分子量条带。4.转基因拟南芥At SG植株GUS基因表达的时空特性分析。对转基因拟南芥植株At SG-2株系进行全生长发育期GUS组织化学染色。分别取种子、萌发的种子、生长7天的幼苗、生长13天的幼苗、花、果荚进行染色。结果表明:At SG-2植株中GUS基因在种子中全部表达,在种子萌发期间不再表达,在生长7天和13天的幼苗中不表达,在花器官中有微弱表达,主要表达在花柱、花瓣和花柄中,在果荚中不表达。5.高浓度蔗糖对转基因拟南芥At SG植株GUS基因表达的影响。已知Patatin启动子在马铃薯中受高浓度蔗糖的诱导。将Patatin启动子驱动的GUS基因转入拟南芥,使用8%蔗糖进行诱导。取高糖诱导的At SG-2株系种子、萌发的种子、生长7天的幼苗、生长13天的幼苗、花、果荚进行染色。结果表明:种子时期在子叶和胚根中全部表达GUS基因,萌发的种子中表达微弱,只在下胚轴中表达。在生长7天的幼苗中子叶,胚柄,根均有表达,胚柄表达最为强烈。在生长13天的幼苗中,子叶、胚柄及叶脉处表达最强烈。在花器官中均有表达,花柱和花瓣处表达最强烈。在果荚中均有表达。(本文来源于《兰州理工大学》期刊2018-06-02）
于安东,滕珂,檀鹏辉,董笛,尚明娟[8]（2018）在《沟叶结缕草ZmPSY基因启动子对拟南芥的转化及功能分析》一文中研究指出利用染色体步移法克隆得到沟叶结缕草(Zoysia matrella)ZmPSY基因的启动子序列。将ZmPSY起始密码子上游的1512bp的启动子序列与GUS基因融合,构建了ZmPSYpro::GUS载体,并利用农杆菌介导的方法转化拟南芥。经潮霉素筛选和PCR鉴定,共获得8个转基因株系。GUS染色结果表明,ZmPSY基因启动子能够驱动GUS基因在拟南芥中表达,且集中在茎叶部位。利用荧光定量技术(qRT-PCR)分析了外施激素和非生物胁迫处理下GUS基因的表达量,结果表明:5μM ABA可诱导GUS表达增强,10μM MeJA和黑暗处理抑制GUS表达,而100μM GA3处理无显着变化。研究成功克隆ZmPSY基因的启动子序列,并证明ZmPSY基因的表达可受ABA、MeJA和黑暗处理的调控,为深入研究ZmPSY基因的转录调控提供了依据。(本文来源于《中国草地学报》期刊2018年03期）
刘志霞,周舟,蔡薇,程姣,任春梅[9]（2018）在《拟南芥防御素基因PDF1.2启动子与GUS重组载体的构建与转化》一文中研究指出PDF1.2基因在植物的防御系统中扮演着重要的角色,其编码产生的植物防御素参与了植物对真菌入侵、病毒感染、不良环境等逆境胁迫的防御反应。试验利用从拟南芥中通过PCR扩增和克隆的该基因启动子构建GUS报告基因的表达载体,通过根癌农杆菌浸渍转化法将表达报告基因转入拟南芥中,筛选获得了转化植株。获得以下主要结果:(1)成功克隆了拟南芥PDF1.2基因的启动子并将其与带GUS标记基因的载体进行了融合,得到了重组的融合载体;(2)成功的将带GUS标记基因的拟南芥PDF1.2基因启动子融合载体转入到拟南芥植株中并利用其自带抗性标记筛选到了抗性植株;(3)利用GUS染色技术检测了转基因植株中PDF1.2基因启动子的表达情况。(本文来源于《作物研究》期刊2018年02期）
刘彩霞,郑唐春,张鑫鑫,葛晓兰,曲冠证[10]（2016）在《小黑杨CYCD3;3基因启动子序列分析及其在拟南芥中的表达》一文中研究指出通过相关网站及生物信息软件对Poptr:CYCD3;3基因启动子序列进行详细分析,从小黑杨(Populus)叶片总DNA中克隆到2 000 bp的目的片段,构建植物表达载体(p CAMBIA1301-Promoter:CYCD3;3),并利用浸花法转化野生型拟南芥(Arabidopsis thaliana);通过抗性筛选和分子检测结果显示,p CAMBIA1301-Promoter:CYCD3;3基因已经整合到拟南芥基因组中。同时对获得的转基因幼苗进行GUS染色并观察,其基因表达模式主要集中在植物分生组织中,由此表明Poptr:CYCD3;3调控CYCD3;3基因在细胞分裂中发挥作用。(本文来源于《东北林业大学学报》期刊2016年08期）
拟南芥基因启动子论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
【目的】分析拟南芥糖运输载体蛋白基因(AtSWEET4)启动子序列及其编码蛋白的结构,并检测病原菌胁迫下AtSWEET4基因的表达特性,为研究AtSWEET4蛋白在拟南芥生长发育和生物胁迫中的作用机制提供理论依据。【方法】采用生物信息学方法分析AtSWEET4基因启动子序列及其编码蛋白的结构,并采用实时荧光定量PCR(qRTPCR)和β-葡萄糖苷酸酶(GUS)组织染色法检测人工接种菜豆晕疫病菌(Pseudomonas syringae pv. phaseolicola,Psp)NPS3121和丁香假单胞菌番茄致病变种(Pseudomonas syringae pathovar tomato,Pst)DC3000后AtSWEET4基因的表达情况。【结果】AtSWEET4蛋白由251个氨基酸组成,分子量为27.8 kD,分子式为C1300H2038N304O346S11,理论等电点(pI)为8.71,脂肪氨基酸指数为118.76,不稳定指数为38.72,平均亲水性指数为0.629,为稳定的亲水蛋白,且含有7个跨膜结构域,无信号肽,为非分泌型蛋白。AtSWEET4蛋白与芥属的亚麻荠和荠菜SWEET4蛋白亲缘关系最近,其次是十字花科的甘蓝和萝卜SWEET4蛋白,与禾本科的二穗短柄草SWEET4蛋白亲缘关系最远。AtSWEET4基因启动子序列中包含核心元件TATA-box、增强子元件CAAT-box、调控植物生长发育相关元件、激素响应相关元件、非生物胁迫响应相关元件和生物胁迫响应相关元件。Psp NPS3121和Pst DC3000均可诱导AtSWEET4基因表达,但表达模式不同:接种Psp NPS3121后6和12 h的AtSWEET4基因表达明显上调,但至接种后24 h又迅速下降;接种Pst DC3000后AtSWEET4基因表达量逐渐增加。【结论】AtSWEET4基因的启动子序列特征及其编码蛋白结构与其参与植物免疫反应密切相关。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
拟南芥基因启动子论文参考文献
[1].陆姗姗,洪园淑,刘萍.苦豆子赖氨酸脱羧酶基因启动子在拟南芥中的表达分析[J].草业学报.2019
[2].刘晓柱,李银凤.拟南芥AtSWEET4基因启动子序列、编码蛋白结构分析及其在病原菌胁迫下表达特性检测[J].南方农业学报.2019
[3].罗箫,甘爽,谢国莉,郭晋雅,蔡易.拟南芥免疫相关基因启动子对免疫信号分子的响应强度分析[J].中国农业大学学报.2019
[4].王雪.拟南芥甘露糖结合凝集素基因At3g21380启动子功能初析[D].曲阜师范大学.2019
[5].王立光,陈军,李静雯.拟南芥AtNHX6基因启动子的克隆及表达分析[J].西北植物学报.2019
[6].张丛,来佳佳,王婷婷,邰付菊.ZmCBL1和ZmCBL9启动子在转基因拟南芥中的活性分析[J].华中农业大学学报.2018
[7].张婷.马铃薯Patatin启动子及其前导肽序列在转基因拟南芥中的表达特性研究[D].兰州理工大学.2018
[8].于安东,滕珂,檀鹏辉,董笛,尚明娟.沟叶结缕草ZmPSY基因启动子对拟南芥的转化及功能分析[J].中国草地学报.2018
[9].刘志霞,周舟,蔡薇,程姣,任春梅.拟南芥防御素基因PDF1.2启动子与GUS重组载体的构建与转化[J].作物研究.2018
[10].刘彩霞,郑唐春,张鑫鑫,葛晓兰,曲冠证.小黑杨CYCD3;3基因启动子序列分析及其在拟南芥中的表达[J].东北林业大学学报.2016