一、青海省家畜住肉孢子虫病流行与研究概况（论文文献综述）
单曲拉姆,朱传刚,纪荣毅,石斌,唐文强,索朗曲吉,扎西央宗,夏晨阳[1]（2021）在《西藏牛羊住肉孢子虫种类鉴别及进化分析》文中指出住肉孢子虫病严重影响畜牧业健康发展,危害肉制品和公共卫生安全。为研究西藏拉萨市临近各县牛羊住肉孢子虫流行情况及虫种鉴定,对西藏拉萨市当雄县和尼木县的牦牛、绵羊、山羊、黄牛、犏牛等共62头（只）牛羊的心肌、膈肌、腿肌、食道肌进行采样。采用压片镜检法对采集的牛羊膈肌进行观察检测,若发现住肉孢子虫包囊即判定为阳性,否则为阴性。采用PCR技术对住肉孢子虫线粒体细胞色素C氧化酶第一亚基（COX1）进行扩增,对62头（只）牛羊的心肌、膈肌、腿肌、食道肌进行检测。结果显示,PCR检测的住肉孢子虫病的阳性率与压片镜检法结果一致,藏牛羊的住肉孢子虫阳性率70.97%;对膈肌PCR产物进行克隆测序,在NCBI上进行同源性比对,共检出4个住肉孢子虫虫种,分别为肉孢子虫（Sarcocystis pilosa）、山羊犬住肉孢子虫（Sarcocystis capracanis）、羊柔嫩住肉孢子虫（Sarcocystis tenella）和家山羊犬肉孢子虫（Sarcocystis hircicanis）,对应样品编号分别为5C、17C、19C和27C,其同源性分别为92.10%、99.71%、99.81%和99.26%;种系发育树结果显示,样品5C、17C、19C、27C与其NCBI上同源性最高的住肉孢子虫虫种Sarcocystis pilosa、Sarcocystis capracani、Sarcocystis tenella和Sarcocystis hircicanis处于同一分支上,且系统发育树中的Bootstrap值较高,很好地证明了研究结果中所确定的分类地位,两者确定为同一种属。另外,在牦牛身上检出了Sarcocystis pilosa,为进一步了解Sarcocystis pilosa生活史提供了线索。
李国婧[2]（2021）在《基于SAG2和GRA7弓形虫ELISA检测方法的研究与应用》文中认为弓形虫（Toxoplasma gondii）是一种专性细胞内寄生虫,其引发的弓形虫病是一种呈世界性分布的人畜共患病,对人类健康和畜牧业危害极大。本研究基于已经被证实可作为良好的弓形虫诊断抗原的膜表面蛋白2（SAG2）和致密颗粒蛋白7（GRA7）作为检测抗原建立了弓形虫的间接ELISA诊断方法,选择了更敏感的SAG2为诊断抗原,检测了2 673份动物血清,其中藏羊（Tibetan sheep）血清907份、牦牛（Yak）血清663份、奶牛（Cow）血清205份、鸡（Chicken）血清500份、猪（Pig）血清337份和马（Horse）血清61份,结果显示,被检动物体内弓形虫总IgG和IgM抗体阳性率分别为44.1%（1 179/2 673）和18.0%（469/2 612）;IgG和IgM均为阳性的占14.9%（389/2 612）,单IgM阳性占3.0%（80/2 612）,单IgG阳性占30.0%（790/2 673）。以受检动物物种分类猪的IgG阳性率最高（90.2%,304/337）,其次是藏羊（50.7%,460/907）、鸡（45.8%,229/500）、牦牛（21.1%,140/663）、奶牛（18.5%,38/205）和马（13.1%,8/61）。IgM抗体阳性率最高的动物为猪（41.8%,141/337）,其次为藏羊（21.2%,191/907）、奶牛（15.1%,31/205）、鸡（12.4%,62/500）和牦牛（6.6%,44/663）。以不同海拔高度分类后结果未见明显变化。综上所述,青海地区经济动物弓形虫的感染率较高,本项研究为今后进一步研究本地区弓形虫病的流行规律和建立相应的防控措施提供了有效的参考数据。
苏晓雪,谢彩英,康明[3]（2019）在《青海省共和县藏羊住肉孢子虫感染情况调查》文中指出为了解青海省共和县藏羊住肉孢子虫感染情况,随机采集该县屠宰藏羊食道肌512份,膈肌32份,心肌32份,利用肉眼观察和压片镜检法对感染情况进行调查并初步观察虫体形态。结果表明,共和县藏羊住肉孢子虫感染情况较严重,阳性检出率为29.86%;不同部位感染率由高到低依次为心肌（96.88%）、膈肌（87.50%）、食道肌（22.07%）;虫体由大到小分别为食道肌（4.47 mm×2.59 mm）、膈肌（150 mm×30μm）、心肌（120 mm×35μm）。
单曲拉姆,夏晨阳,唐文强,石斌,仓木[4]（2019）在《牦牛住肉孢子虫病流行病学及危害研究》文中研究表明住肉孢子虫病严重影响畜牧业健康发展,危害肉制品和公共卫生安全。各种住肉孢子虫产生的住肉孢子虫毒素能严重影响宿主的中枢神经系统和其他重要的生命器官。该文通过资料查阅综述了牦牛住肉孢子虫病病原种类、虫型特点、西藏邻近各省市牦牛住肉孢子虫病的流行情况及其危害,以期为西藏牦牛住肉孢子虫病的研究提供借鉴和参考依据。
李坤[5]（2019）在《牦牛和藏猪常见原虫调查及藏猪肺线虫线粒体基因组分析》文中认为牦牛是地理分布非常有限的偶蹄动物之一,也是高寒地区特有牛种,更是高原地区支柱产业,当地牧民的主要经济来源之一。高寒藏香猪是世界上高海拔地带比较少见的小型猪种,亦是我国珍贵的、独有的猪种。然而,寄生虫病严重威胁着牦牛、藏猪的健康,也制约着牦牛、藏猪产业的发展,某些人畜共患寄生虫,更潜在威胁着人类的健康。近年来,牦牛频发腹泻病,至今尚不清楚导致牦牛腹泻的具体病原。而寄生虫所致的动物腹泻病,占所有腹泻疾病的40%。故为摸清我国珍贵动物（牦牛、藏猪）的常见原虫流行状态;初步挖掘牦牛腹泻的寄生虫病原体;揭示牦牛、藏猪寄生虫的分子特征、挖掘潜在的药物靶基因。本研究开展了牦牛、藏猪常见原虫的血清学调查;基于高通量测序的腹泻牦牛寄生虫病原调查;牦牛、藏猪寄生虫的分子特征研究;藏猪肺线虫线粒体基因组测序和分析,研究结果如下:1.我国高原牦牛、藏猪常见原虫血清学调查通过IHA或ELISA的检测方法对在采自我国高海拔地区的四个省份（西藏、青海、四川、甘肃）的3582份牦牛血清（2011-2017）,开展了牦牛七种寄生虫（弓形虫、犬新孢子虫、泰勒虫、巴贝斯虫、棘球蚴、贝诺孢子虫、住肉孢子虫）的血清学检测。应用ELISA法对2016年采自西藏地区的454份藏猪血清进行了棘球蚴血清学检测。结果表明牦牛这七种寄生虫的总体阳性率分别为25.0%、6.3%、15.1%、21.5%、6.5%、1.1%、0.9%;藏猪棘球蚴阳性率为7.3%。2.我国牦牛、藏猪五种寄生虫线粒体基因扩增及序列分析本研究以在我国西藏地区某屠宰场收集的藏猪肺线虫、结节线虫、蛔虫、包虫的包囊及在四川红原地区采集的牦牛蛔虫为主要研究对象。通过对寄生虫虫体的线粒体分子标记进行基因克隆、序列纯化、基因测序。应用生物信息学软件DNAMAN、Mega等,分别对这五种寄生虫的9种线粒体基因进行了多序列比对和进化分析。结果发现感染我国藏猪的肺线虫为复阴后圆线虫,其中米林县、林芝县及工布江达县藏猪源复阴后圆线虫与澳大利亚野猪源复阴后圆线虫（NC013813.1）同源性为97.5%-97.7%。感染藏猪的结节线虫为三种混合感染（齿食道口线虫、长尾肠结节虫、猩猩管口线虫）。其中猩猩管口线虫为首次在猪上发现。将从藏香猪胃和结肠分离的猩猩管口线虫与NCBI数据库比对发现,其与猩猩管口线虫（AJ619979.1）同源性分别为89%和90%。基于nad1、cox3和ITS三种分子标记基因,发现藏猪胃、盲肠、结肠的线虫阳性率分别为81.13%、66.04%和77.36%。藏猪蛔虫与猪蛔虫（日本、我国湛江）分离株的同源性为98.4%-99.9%,与人蛔虫（日本、巴西、我国临沭）分离株的同源性为99.4%-99.7%。藏猪包虫线粒体cox1基因与包虫G4型（AF346403.11）高度同源,说明感染藏猪的包虫为G4型。藏猪包虫线粒体atp6基因与包虫G6型（AY056613.1）同源性较高,说明感染藏猪的包虫为包虫G6型。感染牦牛的蛔虫为牛弓首蛔虫,且与牛弓首蛔虫（AJ937266.1）同源性为99.7%。3.腹泻牦牛寄生虫病原调查本研究从我国甘南地区,采集了健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛的粪便样品,通过提取粪便微生物基因组DNA（g DNA）和进行18S SSU r DNA序列扩增,应用高通量测序法,全面分析了健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛的粪便寄生虫的多样性与差异性。结果表明,在门水平上,健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛的粪便均检测到线虫门和顶复亚门。其中三组牦牛在线虫门上,无显着差异性（p>0.05）;而在顶复亚门上,腹泻犊牦牛显着高于腹泻成年牦牛（p<0.05）。在纲水平上,健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛的粪便均检测到侧口纲、色矛纲和Gregarinasina（顶复亚门的一个纲）,而仅有腹泻犊牦牛检测到旋毛纲和纤毛虫纲,但健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛,在这5种纲水平上均未发现明显的差异（p>0.05）。在目水平上,健康成年牦牛、腹泻成年牦牛和腹泻犊牦牛的粪便均检测到前庭目、三毛滴虫目、杆线虫目和Eugregarinorida（顶复亚门的一个目）,而Neogregarinorida（顶复亚门的一个目）、毛滴目和Hypotrichomonadida（鞭毛虫刚的一类寄生虫）,仅在腹泻成年牦牛的粪便检测到。腹泻成年牦牛在毛滴目上,显着高于健康成年牦牛（p<0.05）和腹泻犊牦牛（p<0.05）,而健康成年牦牛、腹泻成年牦牛、腹泻犊牦牛,在这其它目水平上均未发现显着的差异（p>0.05）。在科水平上,健康成年牦牛、腹泻成年牦牛和腹泻犊牦牛的粪便均检测到Simplicimonadidae（毛滴目下的一个科）和Haemonchidae（类毛样线虫上科）。而毛圆线虫科仅在健康成年牦牛和腹泻成年牦牛粪便检测到。毛滴虫科和网尾线虫科仅在腹泻成年牦牛粪便检测到。Plectidae（色矛纲下的一个科）、圆线虫科、Echinamoebidae（变形虫门下的一个科）、衣孢虫科、伪角毛虫科和Panagrolaimidae（线虫目下的一个科）,仅在腹泻成年牦牛粪便检测到,且在毛滴虫科上,腹泻成年牦牛显着高于健康成年牦牛（p<0.05）和腹泻犊牦牛（p<0.05）。在属水平上,健康成年牦牛、腹泻成年牦牛和腹泻犊牦牛的粪便均检测到内变形虫属、布克斯顿纤毛虫属和血矛线虫属。而绕线属和Echinamoeba（变形虫门下的一个属）,仅在腹泻成年牦牛的粪便中检测到。毛圆线虫属和锥滴虫属,在健康成年牦牛和腹泻成年牦牛的粪便均检测到,但腹泻犊牦牛的粪便未发现该虫属。簇虫属仅在腹泻犊牦牛的粪便检测出,健康成年牦牛和腹泻成年牦牛的粪便均未发现该虫属。在四毛滴虫属上,腹泻成年牦牛显着高于健康成年牦牛（p<0.05）和腹泻犊牦牛（p<0.05）。4.急性腹泻犊牦牛的寄生虫病原调查本研究从我国四川某牦牛牧区,采集了健康犊牦牛、急性腹泻犊牦牛的新鲜粪便样品。以粪便寄生虫为研究对象、以18S SSU r DNA为切入点、以高通量测序为载体,全面分析了健康犊牦牛、急性腹泻血便死亡犊牦牛的粪便寄生虫的多样性与差异性,以发掘潜在的寄生虫病原体。结果表明,在门水平上,健康犊牦牛、急性腹泻便血死亡犊牦牛的粪便均检测到顶复亚门、槽虫门、苔藓虫门,且健康犊牦牛在槽虫门上显着高于腹泻血便死亡犊牦牛（p<0.0001）,而在顶复亚门上,腹泻血便死亡犊牦牛明显高于健康犊牦牛（p<0.0001）。副基体门仅在健康犊牦牛发现,而Blastocysta、变形虫门仅在腹泻血便死亡犊牦牛检出。在纲水平上,健康犊牦牛、腹泻血便死亡犊牦牛均检出Trichomonadea、Conoidasida、Phylactolaemata,而健康犊牦牛的Trichomonadea（p<0.001）和Conoidasida（p<0.0001）均显着高于腹泻血便死亡犊牦牛。Archamoebae、Aconoidasida、Blastocystidea这三纲仅在腹泻血便死亡犊牦牛粪便检出,而Hypotrichomonadea仅在健康犊牦牛检出。在目水平上,健康犊牦牛、腹泻血便死亡犊牦牛的粪便均检测到Tritrichomonadida、Eugregarinorida和Plumatellida,且Tritrichomonadida、Eugregarinorida在统计学上,健康犊牦牛明显高于腹泻血便死亡犊牦牛（p<0.0001）。Pelobiontida、Piroplasmida、Blastocystida、Adeleorina这四目仅在腹泻血便死亡犊牦牛粪便均检测到,而Hypotrichomonadida仅在健康犊牦牛检出。在科水平上,健康犊牦牛、腹泻血便死亡犊牦牛的粪便均检测到Simplicimonadidae、Gregarinidae和Plumatellidae这3科,且在统计学上,健康犊牦牛的Simplicimonadidae（p<0.0001）和Gregarinidae（p<0.01）均显着高于腹泻血便死亡犊牦牛。Entamoebidae、Theileriidae、Trichomonadidae、Blastocystidae、Cryptosporidae这5科仅在腹泻血便死亡犊牦牛检测到,而Hypotrichomonadidae仅在健康犊牦牛检出。在属水平上,健康犊牦牛、腹泻血便死亡犊牦牛的粪便均检测到Simplicimonas、Gregarina,且健康犊牦牛在这两属上均明显高于腹泻血便死亡犊牦牛,p值分<0.0001和<0.01。Entamoeba、Theileria、Tetratrichomonas、Blastocystis、Cryptosporidium这五种属仅在腹泻血便死亡犊牦牛的粪便检出,而Hypotrichomonas仅在健康组犊牦牛的粪便检测到。5.高原藏猪肺线虫线粒体基因组分析本研究通过测序,将感染藏猪的肺线虫鉴定为萨氏肺线虫（Metastrongylus salmi）,并首次揭示了藏猪M.salmi线粒体基因组信息。藏香猪M.salmi的线粒体基因组大小为13722 bp,碱基AT总含量为73.54%,核酸组成为A（23.52%）、C（6.14%）、G（19.60%）、T（50.02%）、N（UCAG）（0.73%）。包含12种蛋白编码基因（cox1、cox2、cox3、nad1、nad2、nad3、nad4、nad5、nad6、nad4L、atp6、cytb）,22个t RNA和2个r RNA（rrn L、rrn S）,而缺少编码atp8蛋白的基因。藏香猪M.salmi线粒体基因组中的nad4L、atp6、nad2、cob、cox3、cox1、cox2、nad5基因的3‘端会紧挨着一个trn碱基序。藏香猪M.salmi线粒体基因组可翻译氨基酸4237个,其中以ATA为起始密码子的最多41.7%（5/12）;以TAA或TAG为终止密码子的有11个（91.7%）。藏猪M.salmi线粒体基因使用的密码子有63种,苯丙氨酸的密码子UUU的使用频率最高,而除密码子CGC外,脯氨酸的密码子CCC的使用次数最低。综上所述本研究阐明了我国珍贵动物（牦牛、藏猪）的七种寄生虫血清流行病学特点;初步探明了牦牛腹泻的潜在寄生虫病原;确定了5种寄生虫的线粒体基因的分子特征;揭示了藏猪肺线虫线粒体基因组信息、提供了分子标记和潜在的药物靶点信息。知己（不断提高疾病的预防和治疗水平等）和知彼（全面掌握寄生虫的流行状态、分子特征等）,方能有效的解决我国高原牦牛、藏猪的寄生虫疾病,为促进我国畜牧业的蓬勃发展助力,为减少人畜共患寄生虫病对牧民的危害提供理论支持。
李宏亮[6]（2019）在《西藏部分地区牦牛肉孢子虫的形态及其分子特点》文中研究指明肉孢子虫是家畜常见的胞内寄生原虫,其导致的肉孢子虫病常致使宿主生长发育缓慢,严重时引起死亡。我国是牦牛出栏量最大的国家,其主要出产在青藏高原,是当地牧民主要的经济来源。目前,牦牛体内发现的肉孢子虫有2种,牦牛犬肉孢子虫（Sarcocystis poephagicanis Wei,1983）和牦牛肉孢子虫（S.poephagi Wei,1983）,但原始描述简单,且没有提供任何分子数据。本实验利用形态学和4种分子标记（18S rDNA、28S rDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因）对采自西藏地区（拉萨市、那曲市和日喀则市）的牦牛肉孢子虫的自然感染情况、种类和分子系统学进行了研究。本次共采集了 101头牦牛的肌肉样品,镜检后发现肉孢子虫的自然感染率为63.37%（64/101）。基于形态学和4种分子标记特征,共鉴定出5种肉孢子虫:人肉孢子虫（S.hominis Raillietand Lucet,1891）、哈氏肉孢子虫（S.heydorni Dubey,2015）、毛形肉孢子虫（S.hirsuta Moule,1888）、牦牛犬肉孢子虫（S.poephagicanis）和牦牛未定种肉孢子虫（Sarcocystis sp.）。人肉孢子虫（S.hominis）包囊在光镜下有栅栏状突起,长3.9-11.2μm,平均7.1μm（n=38）;电镜下包囊表面突起直立指状,突起内有微管。其18S rDNA、28S rDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因不同克隆之间的平均相似度分别为98.9%（n=9）、99.0%（n=9）、98.7%（n=9）、97.0%（n=9）。。18S rDNA序列与GenBank中黄牛源的人肉孢子虫（S.hominis）的18S rDNA序列相似度最高,平均相似度为98.5%;线粒体COX1基因序列与GenBank中人源的人肉孢子虫（S.hominis）的线粒体COX1基因序列相似度最高,平均相似度为98.3%。哈氏肉孢子虫（S.heydorni）包囊壁薄,高倍镜下有短锥状突起,长1.0-1.8μm,平均1.4μm（n=23）;电镜下包囊表面有小方砖形突起,突起之间的空隙大于突起的宽度。其18SrDNA、28SrDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因不同克隆之间的平均相似度分别为99.2%（n=7）、98.4%（n=9）、99.2%（n=12）、95.8%（n=8）。18S rDNA和线粒体COX1基因序列与GenBank中黄牛源的哈氏肉孢子虫（S.heydorni）的18SrDNA和线粒体COX1基因序列相似度最高,平均相似度分别为99.3%和99.4%。毛形肉孢子虫（S.hirsuta）包囊在光镜下有倾斜指状突起,长3.0-5.00μm,平均4.1μm（n=44）,突起内有一条与包囊表面平行的纵行黑线;电镜下包囊表面有倾斜指状突起,突起中部膨大,两端稍窄,突起表面呈锯齿状。其18SrDNA、28S rDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因不同克隆之间的平均相似度分别为99.0%（n=9）、98.6%（n=8）、99.7%（n=12）、96.2%（n=9）。18SrDNA、28S rDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因序列与GenBank中黄牛源的毛形肉孢子虫（S.hirsuta）的相应序列相似度最高,平均相似度分别为99.0%、99.0%、99.4%和94.8%。牦牛犬肉孢子虫（S.poephagicanis）包囊在光镜下突起毛发状,电镜下,包囊突起呈短棍棒状。其18SrDNA、28SrDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因不同克隆之间的平均相似度分别为99.3%（n=7）、98.7%（n=8）、98.7%（n=9）、96.8%（n=8）。18S rDNA和ITS1基因序列与GenBank中相似度最高的是黄牛的枯氏肉孢子虫（S.cruzi Hasselmann,1926）的相应序列,平均相似度分别为98.2%和73.9%。线粒体COX1基因和28S rDNA序列相似度最高的是S.rangi（Gjerde,1984）和S.levinei（Dissanaikeand Kan,1978）的相应序列,平均相似度分别为91.7%和97.2%。牦牛未定种肉孢子虫（Sarcocystis sp.）包囊在光镜下突起倾斜指状,长1.9-4.7μm,平均3.4μm（n=48）;电镜下包囊表面有呈覆瓦状多层排列的突起,突起表面有电子致密层,基质层内有集结成束的微管。其18SrDNA、28SrDNA、线粒体COX1基因和ITS1基因不同克隆之间的平均相似度分别为98.7%（n=7）、98.3%（n=9）、99.6%（n=12）、95.8%（n=9）。18SrDNA、28SrDNA和线粒体COX1基因序列与GenBank中相似度最高的分别为水牛源的梭状肉孢子虫（S.fusiformis Railliet,1897）（平均相似度为92.4%）、水牛肉孢子虫（S.buffalonisHuong,Dubey,Nikkila and Uggla,1997）（平均相似度为90.5%）和黄牛的偌氏肉孢子虫（S.rommeli Dubey,2015）（平均相似度为81.3%）。基于分子标记序列构建的系统发育树表明牦牛的人肉孢子虫（S.hominis）与来自黄牛（中间宿主）或人（终末宿主）的人肉孢子虫（S.hominis）序列聚成独立的进化分支,与终末宿主是猫科动物的反刍动物的肉孢子虫聚为一支;牦牛的哈氏肉孢子虫（S.hevdorni）与黄牛的哈氏肉孢子虫（S.hevdorni）序列聚成独立的进化分支,与终末宿主是犬科动物的反刍动物的肉孢子虫聚为一支;牦牛的毛形肉孢子虫（S.hirsuta）与GenBank黄牛的毛形肉孢子虫（S.hirsuta）序列聚成独立的进化分支,与终末宿主是猫科动物的反刍动物的肉孢子虫聚为一支;牦牛犬肉孢子虫（S.poephagicanis）独立聚成单一进化分支,与终末宿主是犬科动物的反刍动物的肉孢子虫聚为一支;牦牛未定种肉孢子虫（Sarcocystis sp.）的序列独立聚成单一进化分支,与终末宿主为猫科动物的反刍动物的肉孢子虫聚为一支。总之,基于形态观察和4种分子标记的分析,可以推断出人肉孢子虫（S.hominis）、哈氏肉孢子虫（S.heydorni）和毛形肉孢子虫（S.hirsuta）应是牦牛与黄牛共同享有的肉孢子虫物种;而牦牛未定种肉孢子虫（Sarcocystis sp.）和牦牛犬肉孢子虫（S.poephagicanis）应只是牦牛的肉孢子虫物种。
董辉,陆瑶瑶,杨玉荣[7]（2017）在《绵羊和山羊住肉孢子虫流行病学及分型研究进展》文中研究说明动物住肉孢子虫病可引起畜牧养殖业的经济损失,影响食品质量安全,威胁人类健康。国际上已确定的绵羊（Ovis aries）住肉孢子虫有4种:S.tenella、S.arieticanis、S.gigantea、S.medusiformis,山羊（Capra hircus）住肉孢子虫有3种:S.capracanis、S.hircicanis、S.moulei。本文综述绵羊和山羊住肉孢子虫的生活史、国内和国际的流行情况、致病性、形态学特点和诊断方法,以期为中国绵羊和山羊住肉孢子虫的生物学特征研究及其诊断分型提供有力基础依据。
马豆豆,蔡进忠,李春花,雷萌桐,孙建[8]（2017）在《青海省牦牛住肉孢子虫病流行病学调查研究》文中研究表明采用压片镜检法对玉树州玉树县和治多县、果洛州久治县和达日县、海南州贵德县、兴海县和贵南县、海西州乌兰县和天峻县、海北州门源县和祁连县等地区、黄南州河南县、海东地区循化县共13个县的390头牦牛住肉孢子虫感染情况进行了调查。结果:共检出阳性牦牛144头,牦牛住肉孢子虫感染率在23.3%53.3%之间,平均感染率36.92%,平均感染强度为4.79个/0.1 g。其中感染率最高为门源县,达53.3%,感染强度最高为乌兰县,达10.1（2.1314.25）个/0.1 g。结果显示,调查地区牦牛均不同程度感染住肉抱子虫,与以往调查结果比较,感染程度减轻,提出了今后防控牦牛住肉孢子虫病的策略。
李世双[9]（2014）在《青海青石嘴羊住肉孢子虫感染情况的调查》文中进行了进一步梳理住肉孢子虫病是由住肉孢子虫科的多种住肉孢子虫寄生在动物体内所引起的原虫病。住肉孢子虫除寄生于羊、牛、马、猪等家畜外,在鼠类、禽类和人体内均有寄生。羊住肉孢子虫,虫体较大,呈圆形或椭圆形,长1㎝左右,主要寄生在绵羊和山羊的食道、横纹肌、膈肌和心肌。家畜感染住肉孢子虫病通常不表现临床症状,一般认为致病作用很小,但经济上的损失很大。轻度或中度感染无可见病症,严重感染时,可呈现跛行,虚弱,消
殷铭阳,周东辉,刘建枝,蔡进忠,朱兴全[10]（2014）在《中国牦牛主要寄生虫病流行现状及防控策略》文中研究指明牦牛主产于中国,主要生活在青藏高原地区,因其能适应高寒的生态条件及耐粗、耐劳等特性,被誉为"高原之舟"。寄生虫病是牦牛常见的疾病,严重危害着牦牛的健康。作者从中国牦牛主要寄生虫病的流行现状及防控策略进行了综述,以期为牦牛寄生虫病防制提供参考。
二、青海省家畜住肉孢子虫病流行与研究概况（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、青海省家畜住肉孢子虫病流行与研究概况（论文提纲范文）
（1）西藏牛羊住肉孢子虫种类鉴别及进化分析（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.1.1 主要试剂血液/细胞/组织基因组 |
| 1.1.2 主要仪器 |
| 1.1.3 样品采集 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 光学显微镜镜检 |
| 1.2.2 分子生物学检测 |
| 1.2.3 克隆测序及系统发育树构建分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 光学显微镜镜检 |
| 2.2 分子生物学检测 |
| 2.3 序列分析 |
| 2.4 种系发育树分析 |
| 3 讨论 |
（2）基于SAG2和GRA7弓形虫ELISA检测方法的研究与应用（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 主要符号对照表 |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 弓形虫和弓形虫病 |
| 1.2 弓形虫病的诊断 |
| 1.3 本研究的目的 |
| 第2章 弓形虫的体外、体内培养 |
| 2.1 目的与意义 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 小结 |
| 第3章 可溶性抗原的制备和ELISA诊断方法的验证 |
| 3.1 目的与意义 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 小结 |
| 第4章 青海地区部分动物弓形虫病检测 |
| 4.1 目的与意义 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 个人简介 |
（3）青海省共和县藏羊住肉孢子虫感染情况调查（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 压片镜检 |
| 1.2.2 染色切片 |
| 1.2.3 数据统计 |
| 2 结果 |
| 2.1 压片镜检结果 |
| 2.2 藏羊住肉孢子虫感染情况 |
| 2.3 膈肌、心肌H.E.染色结果 |
| 3 讨论 |
（4）牦牛住肉孢子虫病流行病学及危害研究（论文提纲范文）
| 0 引言 |
| 1 牦牛住肉孢子虫种类 |
| 2 形态学与生物学特点 |
| 3 流行情况 |
| 4 危害 |
| 5 结论 |
（5）牦牛和藏猪常见原虫调查及藏猪肺线虫线粒体基因组分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩略词表(abbreviation) |
| 第一部分 文献综述 |
| 1 牦牛和藏猪概况 |
| 1.1 牦牛和藏猪的简介 |
| 1.2 牦牛和藏猪的分布 |
| 1.3 牦牛和藏猪的价值 |
| 1.4 牦牛和藏猪的养殖现状及面临的问题 |
| 2 牦牛的主要寄生虫病 |
| 2.1 牦牛球虫病 |
| 2.2 牦牛巴贝斯虫病和泰勒虫病 |
| 2.3 牦牛皮蝇蛆病 |
| 2.4 牦牛包虫病 |
| 2.5 牦牛弓形虫病 |
| 2.6 牦牛犬新孢子虫病 |
| 2.7 牦牛隐孢子虫病 |
| 2.8 牦牛贾第鞭毛虫病 |
| 2.9 牦牛微孢子虫病 |
| 2.10 牦牛弓首蛔虫病 |
| 2.11 牦牛肝片吸虫病 |
| 2.12 牦牛住肉孢子虫病 |
| 2.13 绵羊夏伯特线虫病 |
| 3 藏猪的主要寄生虫病 |
| 3.1 藏猪弓形虫病 |
| 3.2 藏猪肺线虫病 |
| 3.3 藏猪包虫病 |
| 3.4 藏猪蛔虫病 |
| 3.5 藏猪旋毛虫病 |
| 3.6 藏猪结节线虫病 |
| 3.7 藏猪疥螨病 |
| 3.8 藏猪鞭虫病 |
| 3.9 藏猪球虫病 |
| 3.10 藏猪棘头虫病 |
| 4 寄生虫病的危害 |
| 4.1 寄生虫病对家畜的危害 |
| 4.2 寄生虫病对人的危害 |
| 4.3 寄生虫病对畜牧产业的影响 |
| 5 寄生虫的主要检测方法 |
| 5.1 流行病学 |
| 5.1.1 剖检 |
| 5.1.2 虫卵检测 |
| 5.1.3 血清学检测 |
| 5.2 寄生虫分离鉴定 |
| 5.2.1 形态学鉴定 |
| 5.2.2 分子鉴定 |
| 5.3 线粒体基因组研究 |
| 5.4 高通量测序 |
| 5.5 组学研究 |
| 6 本研究的意义 |
| 第二部分 试验部分 |
| 第一章 牦牛、藏猪七种寄生虫疾病的血清学调查 |
| 1 研究背景 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 材料 |
| 2.1.1 待检血清 |
| 2.1.2 ELISA和 IHA检测试剂盒 |
| 2.1.3 主要仪器设备 |
| 2.2 方法及结果判定 |
| 3 检测结果 |
| 3.1 牦牛弓形虫的检测结果 |
| 3.2 牦牛犬新孢子虫血清学检测结果 |
| 3.3 牦牛和藏猪棘球虫血清学检测结果 |
| 3.4 牦牛巴贝斯虫、泰勒虫血清学检测结果 |
| 3.5 牦牛贝诺孢子虫血清学检测结果 |
| 3.6 牦牛住肉孢子虫血清学检测结果 |
| 4 分析与讨论 |
| 4.1 弓形虫在青藏高寒地区牦牛的流行情况 |
| 4.2 犬新孢子虫在青藏高原部分地区的流行情况 |
| 4.3 棘球蚴在青藏高原部分地区的流行情况 |
| 4.4 巴贝斯虫和泰勒虫在青藏高原部分地区的流行情况 |
| 4.5 贝诺孢子虫在青藏高原部分地区的流行情况 |
| 4.6 住肉孢子虫在青藏高原部分地区的流行情况 |
| 5 总结 |
| 第二章 腹泻牦牛寄生虫病原调查 |
| 1 研究背景 |
| 2 材料和方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验动物 |
| 2.1.2 样品采集 |
| 2.1.3 实验仪器 |
| 2.1.4 试验试剂 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 牦牛粪便微生物基因组DNA的提取 |
| 2.2.2 18S SSU rDNA V4片段扩增 |
| 2.2.3 PCR扩增产物电泳、回收纯化 |
| 2.2.4 PCR产物荧光定量、混样 |
| 2.2.5 高通量测序文库的构建 |
| 2.2.6 文库质检与测序 |
| 2.2.7 测序分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 基因组DNA提取结果 |
| 3.2 微生物18S SSU rDNA V4 区的PCR扩增结果 |
| 3.3 测序量与序列长度统计 |
| 3.4 牦牛样本Alpha多样性分析 |
| 3.5 Alpha多样性指数计算与差异性分析 |
| 3.6 不同分类水平上腹泻牦牛与健康牦牛寄生虫差异性分析 |
| 3.6.1 门水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.2 纲水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.3 目水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.4 科水平上比较不同组牦牛寄生虫多样性 |
| 3.6.5 属水平上比较不同组牦牛寄生虫多样性 |
| 4 分析讨论 |
| 第三章 急性腹泻牦牛的寄生虫病原分析 |
| 1 研究背景 |
| 2 材料和方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验动物 |
| 2.1.2 样品采集 |
| 2.1.3 实验仪器 |
| 2.1.4 试验试剂 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 牦牛粪便微生物基因组DNA的提取 |
| 2.2.2 18 S SSU rDNA V4片段扩增 |
| 2.2.3 PCR扩增产物电泳、回收纯化 |
| 2.2.4 PCR产物荧光定量、混样 |
| 2.2.5 高通量测序文库的构建 |
| 2.2.6 文库质检与测序 |
| 2.2.7 测序分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 基因组DNA(g DNA)提取结果 |
| 3.2 微生物18S SSU rDNA V4 区的PCR扩增结果 |
| 3.3 测序量与序列长度统计 |
| 3.4 Alpha多样性分析 |
| 3.5 Alpha多样性指数计算与差异性分析 |
| 3.6 不同分类水平上腹泻犊牦牛与健康犊牦牛寄生虫差异性分析 |
| 3.6.1 门水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.2 纲水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.3 目水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.4 科水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 3.6.5 属水平上比较不同组牦牛寄生虫差异性 |
| 4 分析讨论 |
| 第四章 牦牛、藏猪五种寄生虫线粒体基因扩增及序列分析 |
| 1 研究背景 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 材料 |
| 2.1.1 主要试剂 |
| 2.1.2 主要仪器设备 |
| 2.2 方法 |
| 2.2.1 虫株的收集与保存 |
| 2.2.2 虫株的形态学鉴定 |
| 2.2.3 虫体基因组DNA(g DNA)的提取 |
| 2.2.4 目的基因片段的扩增、电泳和切胶回收 |
| 2.2.5 DNA定量、基因克隆、质粒提取及测序 |
| 2.2.6 序列比对及进化分析 |
| 3 结果 |
| 3.1 PCR扩增结果 |
| 3.2 DNA定量、基因克隆、质粒提取结果 |
| 3.3 序列比对与进化分析 |
| 4 讨论 |
| 5 总结 |
| 第五章 藏猪肺线虫线粒体基因组分析 |
| 1 研究背景 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 主要试剂和仪器 |
| 2.2.1 主要试剂 |
| 2.2.2 主要仪器 |
| 2.3 试验方法 |
| 2.3.1 藏猪肺线虫线粒体基因组DNA的提取 |
| 2.3.2 藏猪肺线虫线粒体DNA检测 |
| 2.3.3 肺线虫线粒体文库构建 |
| 2.3.4 藏猪肺线虫测序文库质量检测 |
| 2.4 测序 |
| 2.5 测序结果处理与分析 |
| 2.5.1 藏猪肺线虫线粒体基因组组装 |
| 2.5.2 藏猪肺线虫线粒体基因组注释 |
| 2.5.3 进化分析 |
| 3 试验结果 |
| 3.1 藏猪肺线虫线粒体DNA提取结果 |
| 3.2 藏猪肺线虫线粒体基因组测序数据结果 |
| 3.3 藏猪肺线虫线粒体基因组概况 |
| 3.3.1 藏猪肺线虫线粒体基因组大小估计 |
| 3.3.2 藏猪肺线虫线粒体基因组组装结果及评价 |
| 3.4 藏猪肺线虫线粒体基因组组分分析 |
| 3.4.1 藏猪肺线虫线粒体基因组编码/非编码基因分析 |
| 3.4.2 藏猪肺线虫线粒体基因组GC含量分析 |
| 3.4.3 藏猪肺线虫线粒体基因组密码子与氨基酸分布分析 |
| 3.5 藏猪肺线虫线粒体基因组功能分析 |
| 3.6 藏猪肺线虫线粒体基因组可视化分析 |
| 3.7 藏猪肺线虫线粒体基因组进化分析 |
| 4 分析与讨论 |
| 全文结论 |
| 参考文献 |
| 附录1 |
| 致谢 |
（6）西藏部分地区牦牛肉孢子虫的形态及其分子特点（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 肉孢子虫的发现及分类地位 |
| 2 肉孢子虫的生活史 |
| 3 肉孢子虫的致病性 |
| 4 肉孢子虫的分类标准 |
| 4.1 肉孢子虫的包囊形态 |
| 4.2 宿主特异性 |
| 4.3 遗传标记的分子特征 |
| 5 牦牛肉孢子虫的研究背景和意义 |
| 5.1 牦牛肉孢子虫的国内外研究现状 |
| 5.2 研究意义 |
| 第二章 牦牛肉孢子虫的形态学和分子系统学研究 |
| 1 前言 |
| 2 材料和方法 |
| 2.1 牦牛肌肉样品采集 |
| 2.2 牦牛肌肉样品鉴定 |
| 2.3 肉孢子虫包囊的分离和光镜观察 |
| 2.4 肉孢子虫包囊的透射电镜观察 |
| 2.5 分子实验试剂及实验仪器 |
| 2.5.1 实验试剂及其配置方法 |
| 2.5.2 实验仪器 |
| 2.6 分子实验方法 |
| 2.6.1 单包囊DNA提取 |
| 2.6.2 目的基因片段PCR扩增 |
| 2.6.3 PCR产物的回收和纯化 |
| 2.6.4 目的片段的连接和转化 |
| 2.6.5 阳性克隆检测 |
| 2.6.6 序列测定 |
| 2.6.7 序列分析 |
| 3 实验结果 |
| 3.1 牦牛肌肉样品Cytb基因鉴定结果 |
| 3.2 自然感染率调查 |
| 3.3 牦牛肉孢子虫包囊形态 |
| 3.3.1 人肉孢子虫(S.hominis) |
| 3.3.2 哈氏肉孢子虫(S.heydorni) |
| 3.3.3 毛形肉孢子虫(S. hirsuta) |
| 3.3.4 牦牛未定种肉孢子虫(Sarcocystis sp.) |
| 3.3.5 耗牛犬肉孢子虫(S.poephagicanis) |
| 3.4 牦牛肉孢子虫的基因序列分析 |
| 3.4.1 牦牛肉孢子虫的18S rDNA序列分析 |
| 3.4.2 牦牛肉孢子虫的28S rDNA序列分析 |
| 3.4.3 牦牛肉孢子虫的COX1基因序列分析 |
| 3.4.4 牦牛肉孢子虫的ITS1基因序列分析 |
| 3.5 牦牛肉孢子虫的基因序列的遗传距离分析 |
| 3.6 牦牛肉孢子虫基于4种基因序列的分子系统学分析 |
| 3.6.1 牦牛肉孢子虫基于18S rDNA序列的分子系统学分析 |
| 3.6.2 牦牛肉孢子虫基于28S rDNA序列的分子系统学分析 |
| 3.6.3 牦牛肉孢子虫基于线粒体COX1基因序列的分子系统学分析 |
| 3.6.4 牦牛肉孢子虫基于ITS1基因序列的分子系统学分析 |
| 4 讨论 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 攻读硕士学位期间完成的科研成果 |
| 致谢 |
（7）绵羊和山羊住肉孢子虫流行病学及分型研究进展（论文提纲范文）
| 1 生活史 |
| 2 流行病学 |
| 2.1 世界各国的感染情况 |
| 2.2 在我国的流行情况 |
| 3 致病性 |
| 4 形态学特征 |
| 4.1 光学显微镜下的形态结构 |
| 4.2 超微结构 |
| 5 分子生物学分型 |
| 6 讨论 |
（8）青海省牦牛住肉孢子虫病流行病学调查研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 调查动物 |
| 1.2 样品的采集 |
| 1.3 样品的保存 |
| 1.4 制片 |
| 1.5 镜检 |
| 1.6 判定方法 |
| 2 结果 |
| 2.1 压片镜检 |
| 2.2 牦牛住肉孢子虫感染情况调查结果 |
| 2.3 青海省牦牛各部位住肉孢子虫调查结果 |
| 3 讨论 |
（9）青海青石嘴羊住肉孢子虫感染情况的调查（论文提纲范文）
| 1 调查地自然概况 |
| 2 调查 |
| 2.1 调查对象 |
| 2.2检查方法 |
| 3 调查结果 |
| 4 小结与讨论 |
（10）中国牦牛主要寄生虫病流行现状及防控策略（论文提纲范文）
| 1中国牦牛主要寄生虫病的流行现状 |
| 1.1牦牛蠕虫病的流行现状 |
| 1.1.1牦牛消化道线虫病 |
| 1.1.2牦牛绦虫病 |
| 1.1.2.1牦牛莫尼次绦虫病 |
| 1.1.2.2牦牛棘球蚴病 |
| 1.1.2.3牦牛脑包虫病 |
| 1.1.3牦牛吸虫病 |
| 1.1.3.1牦牛肝片吸虫病 |
| 1.1.3.2牦牛前后盘吸虫病 |
| 1.2中国牦牛原虫病的流行现状 |
| 1.2.1牦牛弓形虫病 |
| 1.2.2牦牛隐孢子虫病 |
| 1.2.3牦牛新孢子虫病 |
| 1.2.4牦牛焦虫病 |
| 1.2.5牦牛住肉孢子虫病 |
| 1.3中国牦牛外寄生虫病的流行现状 |
| 1.3.1牦牛皮蝇蛆病 |
| 1.3.2牦牛其他外寄生虫病 |
| 2中国牦牛主要寄生虫病的防制策略 |
| 2.1加强宣传教育工作 |
| 2.2预防性驱虫 |
| 2.3环境驱虫 |
| 2.4施行安全放牧措施 |
| 2.5加强饲养管理工作 |
| 3小结 |
四、青海省家畜住肉孢子虫病流行与研究概况（论文参考文献）
- [1]西藏牛羊住肉孢子虫种类鉴别及进化分析[J]. 单曲拉姆,朱传刚,纪荣毅,石斌,唐文强,索朗曲吉,扎西央宗,夏晨阳. 中国草食动物科学, 2021(05)
- [2]基于SAG2和GRA7弓形虫ELISA检测方法的研究与应用[D]. 李国婧. 青海大学, 2021(01)
- [3]青海省共和县藏羊住肉孢子虫感染情况调查[J]. 苏晓雪,谢彩英,康明. 中国兽医杂志, 2019(12)
- [4]牦牛住肉孢子虫病流行病学及危害研究[J]. 单曲拉姆,夏晨阳,唐文强,石斌,仓木. 畜牧兽医科学(电子版), 2019(19)
- [5]牦牛和藏猪常见原虫调查及藏猪肺线虫线粒体基因组分析[D]. 李坤. 华中农业大学, 2019(01)
- [6]西藏部分地区牦牛肉孢子虫的形态及其分子特点[D]. 李宏亮. 云南大学, 2019(03)
- [7]绵羊和山羊住肉孢子虫流行病学及分型研究进展[J]. 董辉,陆瑶瑶,杨玉荣. 中国人兽共患病学报, 2017(09)
- [8]青海省牦牛住肉孢子虫病流行病学调查研究[J]. 马豆豆,蔡进忠,李春花,雷萌桐,孙建. 畜牧与兽医, 2017(05)
- [9]青海青石嘴羊住肉孢子虫感染情况的调查[J]. 李世双. 中国兽医杂志, 2014(10)
- [10]中国牦牛主要寄生虫病流行现状及防控策略[J]. 殷铭阳,周东辉,刘建枝,蔡进忠,朱兴全. 中国畜牧兽医, 2014(05)